BG Q FF 强阴离子层析介质
1. 产品简介
离子交换层析(IonExchangeChromatography)是根据生物分子表面电荷(种类、 数目和分布)特异性实现对不同生物大分子分离纯化最常用的方法。博进生物开发的BG QHL FF 强阴离子交换介质以琼脂糖凝胶微球作为基质,采用博进生物设计的高载量配基合成技术提升离子交换基团吸附性能,具有载量高、易于放大等特点。可以满足捕获、中度纯化、精细纯化、分析纯化各环节的应用,为客户提供生物样品从实验室纯化到工业化生产的整体解决方案。
2. 产品参数
| 参数 | 技术指标 |
| 粒径范围 | 45-165 μm |
| 基质 | 琼脂糖凝胶 |
| 功能基 | 季胺基(-CH2 N+(CH3 )3 ) |
| 功能基类型 | 强碱型配基 |
| 动态载量 | ≥150mg BSA/ml wet resin gel |
| 典型应用 | 重组蛋白、血液制品、酶、多糖、核酸等的分离纯化 |
| 最大耐压 | 0.3 MPa |
| pH稳定性 | pH3-13 |
| 保存 | 2~30℃(20%乙醇) |
3.使用方法
强阴离子交换介质广泛用于重组蛋白、血液制品、酶、多糖、核酸等的层析分离。层析 操作通常包括碱洗消毒、平衡、上样、淋洗、洗脱、再生、原位清洗等步骤。
具体的操作方法如下:
5.1 碱洗消毒: 用0.5MNaOH低流速冲洗层析柱3CV。
5.2 平衡: 先用高浓度缓冲液(如 500mMHAC-NaAC,pH5.2)冲5-10CV,然后后用低浓度缓冲 4 QHL强阴离子交换介质 BG QHL FF 产品说明书 文件编号:BG-IFU-32-001/A(00) 液(如 20mMHAC-NaAC,pH5.2具体的缓冲体系应根据目标蛋白的稳定性和等电点进行 筛选和优化)以250cm/h平衡离子交换柱10-15CV,至流出液电导和pH不变(与平衡液 一致)。
5.3 上样: 样品缓冲液应尽可能与平衡液一致,固体样品可用平衡液溶解配制;低浓度样品溶液可 用平衡液透析或添加相应量的盐;高浓度样品溶液可用平衡液稀释。为了避免堵塞层析柱, 样品溶液应经离心或微滤(0.45μm)处理。上样量根据介质的载量和样品溶液中目标蛋白 的含量计算。
5.4 淋洗: 上样结束后继续用平衡缓冲液淋洗,直至紫外下降至基线。
5.5 洗脱: 用洗脱缓冲液(如20mMHAC-NaAC+1MNaCl,pH5.2)洗脱,洗脱方式可采用pH 梯度洗脱、线性梯度洗脱或阶梯式梯度洗脱,收集流出液。
5.6 再生: 每次层析之后可用1-2MNaCl清洗层析柱,除去强吸附蛋白。
5.7 原位清洗(CIP): 柱子使用5-10次(具体次数与原料的种类和来源及实验要求有关)后,需要对柱子进 行原位清洗:
(1)对于通过离子键强结合的蛋白,可用2MNaCl清洗3-4CV;
(2)对沉淀蛋白、疏水性结合的蛋白、脂蛋白,可用0.5MNaOH冲洗3-4CV;
(3)对强疏水性结合的蛋白、脂蛋白和脂类物质,可用70%乙醇或30%异丙醇以不 高于上限压力的流速冲洗5-10min(使用高浓度的有机溶剂时,为了避免产生气泡,应采 5 QHL强阴离子交换介质 BG QHL FF 产品说明书 用逐步增加有机溶剂浓度的方法)。
5.8 保存: 2-30℃储存于20%乙醇中;层析柱中的介质可用20%的乙醇冲洗后保存于2-30℃。
5.9 其它注意事项: 在使用和保存柱子的时候,要避免柱子流干或密封不严,防止气泡进入。
4.订购信息
| 产品名称 | 货号 | 规格 |
| BGQHLFF 强阴离子交换介质 |
BG32-0U20-02 | 50ml |
| BG32-0U20-04 | 500ml | |
| BG32-0U20-05 | 1L | |
| BG32-0U20-07 | 10L | |
| BG32-0U20-08 | 20L |